Depuis les vingt dernières années, différents dispositifs expérimentaux ont été proposés dans le but d'étudier in vitro les réactions et le fonctionnement des cellules de notre organisme, sous l'effet des forces mécaniques. Les plus répandus parmi ces dispositifs sont probablement les chambres d'écoulement à parois parallèles. Les cellules adhérentes à la paroi inférieure sont soumises à une contrainte hydrodynamique tangentielle, due à l'écoulement du fluide (milieu de culture adapté à la préservation de la viabilité des cellules) entre les 2 parois. Dans la plupart des cas, les parois sont en verre et permettent ainsi l'observation microscopique des cellules sous flux [1]. Cependant, dans nombre de situations (hémodialyseurs, bioréacteurs, prothèses vasculaires,...), les cellules (globules blancs, fibroblastes,...) se trouvent au contact d'une paroi (biomatériau) poreuse. Il importe donc de pouvoir comprendre les comportements cellulaires (déformation, détachement, migration, réponses biochimiques) au contact de ces biomatériaux poreux, sous l'effet combiné des contraintes tangentielles et de la pression transmurale. L'objectif de notre travail a donc été de concevoir un outil permettant d'étudier ces comportements cellulaires.